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Plateformes techniques

Equipe "Ecoulements et environnement" du Lusac (EA 42 53)

Missions de la plateforme

  • Proposer aux laboratoires de l’équipe Ecoulements et Environnement du LUSAC (EA 4253) un ensemble cohérent d’équipements multidisciplinaires dans le domaine de l’Environnement marin (Océanographie, Géologie, Biologie) appliqués à différents secteurs économiques (Energie, Infrastructures anthropiques, Aquaculture…) ;  
  • Accompagner la réalisation de leurs programmes de recherche régionaux, nationaux et internationaux ;
  • Apporter aux chercheurs un soutien technique pour l’utilisation de ces équipements spécifiques ;         
  • S’intégrer dans des structures fédératives intra et inter-établissements : SFR Mer Littoral Normand (MerLIN) et GIS ECUME;     
  • Former et encadrer des personnels (ITRF, EC), des doctorants et des post-doctorants dans leurs travaux de recherche sur les techniques accessibles via la plateforme ;         
  • Exercer des actions d’enseignement et de formation (étudiants de 2nd et de 3ème cycle, auditeurs du Cnam et personnels d’établissements publics et privés) ;      
  • Mener à bien des contrats de R&D collaboratifs et des prestations avec des entreprises et des structures académiques.

Plateau « Hydrographie Océanographie Opérationnelle » (H2O)

Ce plateau est divisé en 3 pôles d’outils opérationnels pouvant être déployé en domaine littoral ou offshore : (a) Caractéristiques de la masse d’eau, (b) Géosciences marines

Caractéristiques de la masse d’eau

Responsables : Emmanuel Poizot, Claire Marion

              Hydrodynamique

  • Courantomètre ADCP RDI Sentinel V50
  • Courantomètre ADCP RDI Workhorse
  • 2 Courantomètres Doppler SEAGUARD RCM AANDERAA
  • Courantomètre Vector ADV Nortek
  • 5 sondes CTD dont 4 Seabird SBE37SMP 1000 m et 7000 m
  • Sonde Smatch NKE
  • Sonde SAMBAT NKE
  • Plates-formes de mouillage anti-chalutage
  • Marégraphes (NKE SP2T)
  • Largueurs acoustiques
  • Capteurs de pression (Rugged Troll 100, in Situ)
  • Capteurs de turbidité (OBS)

Prélèvements physico-chimiques

  • Bouteille Niskin
  • Bouteille Van Dorn
  • Drague rallier du baty
  • Cloches benthiques autonomes émergés (Température, Humidité, CO2 IR)

Géosciences marines

Responsables : Yann Méar, Claire Marion, Gwendoline Gregoire

  • Prélèvement sédimentaire - Benne Shipek, Benne Eckman (petite et moyenne), Carottier d’interface
  • Positionnement / Nivellement (Niveau optique Leica, Tachéomètre Leica TC600)
  • Photogrammétrie
  • Centrale inertielle SBG Ellipse 2
  • Banc de capacité SIG
  • Célérimètre VALEPORT
  • Sismique : Delph Seismic Acquisition, Boomer
  • Bathymétrie : Sondeur RESON SEABAT, Lidar
  • Récepteur GNSS RTK (Trimble, R12)

Équipements mutualisés inter-pôles

  • Drones homologués S1, S2, S3 (Mavic 2 Pro, M300 RTK)
  • Perche D-RTK (DJI)
  • LIDAR Zenmuse L1 (DJI)
  • Caméra multispectrale RedEdge-Mx (Micasense)

Savoirs faire associés :

Caractérisation de la masse d’eau

  • Mesure in situ des paramètres physico-chimiques de la masse d’eau et à l’interface eau-sédiment ;
  • Utilisation du système DYSPI (Observation in situ du transport sédimentaire) ;
  • Caractérisation de l’hydrodynamisme et de la dynamique sédimentaire ;
  • Observation in-situ des flux sédimentaires, suivi des structures sédimentaires ;
  • Echantillonnages biologiques, eau de mer et MES à haute fréquence sur la colonne d’eau.

Géosciences marines

  • Cartographie 2D/3D des fonds marins ;
  • Cartographie et morphologie du littoral ;
  • Prospection du sous-sol ;

Échantillonnages sédimentaires superficiel et en profondeur.

Plateau « Bassins d’Expérimentations en Conditions Contrôlées » (BE2C)

Ce plateau est organisé en 2 pôles d’expérimentation hébergés sur deux sites différents : (a) Hall d’expérimentation en aquaculture (CNAM-Intechmer) et sous serre, et (b) Expérimentation physique

Hall d’expérimentation en aquaculture et sous serre (disponible en septembre 2025)

Responsable : Sofiene Tlili, Régis Gallon (en attendant)

Hall aquaculture (61m2) :

Le hall aquaculture propose une surface de 61m2 dédiée à la recherche :

  • Arrivée eau douce / eau de mer brute
  • Arrivée air surpressée
  • Circuit recirculé thermorégulé
  • Bacs de 500l (carré 1mx1xmx50cm)
  • Bacs de 2m3 (carré 2mx2mx50cm)

Serre expérimentale thermorégulée (80 m2) :

  • Arrivée eau douce / eau de mer brute
  • Arrivée air surpressée
  • Circuits recirculés thermorégulés
  • Bacs de 500l (carré 1mx1xmx50cm)
  • Bacs de 2m3 (carré 2mx2mx50cm)
  • Deux raceways (longueur 7m)

Plateforme d’élevage et de culture en extérieur :

  • Arrivée eau douce / eau de mer brute
  • Arrivée air surpressée
  • Bacs de 2m3 (carré 2mx2mx50cm)
  • Systèmes de culture amovibles

Expérimentation physique hydrodynamique

Responsable : Alina Santa-Cruz

  • Veine d’expérimentation hydrodynamique (10 m/s) (10 m de long et 5 m de haut)
  • Mesures Par Vélocimétrie par Images de Particules (PIV) - LASER SOLO III PIV et LASER LITRON
  • Courantomètre profileur Doppler Laser ADCP (Acoustic Doppler Laser Profiler)
  • Rhéomètre et Rhéoscope

Savoirs faire associés :

Aquaculture

  • Elevage de téléostéens
  • Culture de plantes halophytes
  • Culture d’algues
  • AMTI
  • Aquaponie
  • Contrôle des systèmes automatisés

Physique

Expérimentation physique en courants forts.

Plateau de Traitements et d’Analyses en laboratoire appliqués au Milieu Marin (TAMA)

Ce plateau est organisé en 3 pôles analytiques : (a) Sédimentologie-Géochimie, (b) Analyses physiologiques et (c) Analyses moléculaires.

Sédimentologie – Géochimie

Responsables : Anne Murat, Gwendoline Grégoire

  • Granulomètre laser LA 960 HORIBA avec passeur automatique
  • Caméra vidéo numérique pour analyse des grains
  • Analyseur Carbone-Soufre LECO CS 744
  • Analyseurs élémentaires par Fluorescence X (AMETEK - SCOUT et XSORT)
  • Lyophilisateur grand volume (Christ 1-8 LSC Plus)
  • Vibro-broyeurs à billes 100 à 10 ml (RETSCH PM 100 et MM400)
  • Tamiseuse RETSCH AS CONTROL 200 (Tamis de 20 µm à 20 mm)
  • Diviseur de sédiment PT 100
  • Four à moufle (Nabertherm LT 40/11)

Séparation et analyses moléculaires/ioniques

Responsables : Florian Cesbron, Régis Gallon

  • Sonicateur (Misonix, XL 2020)
  • Presse de French (Thermo electron corporation)
  • Centrifugeuse (Hettich, Rotina 420R)
  • Ultracentrifugeuse (Beckman Coulter, L-100XP)
  • UPLC (Waters, Aquity)
  • Matériel pour électrophorèses 1D et 2D de protéines (Biorad)
  • Matériel pour électrophorèses 1D sur gel d’agarose d’acides nucléiques (Biorad)
  • Scanner de gels (Biorad, 583 et Gel Doc XR+)
  • Thermocycleur pour PCR et qPCR (Biorad, CFX connect)
  • Nano-spectrophotomètre pour acides nucléiques (Biospec, nano)
  • Spectrophotomètre d’absorbance (Jenway, 6715)
  • Fluorimètre (Trilogy)
  • Lecteur de microplaques (pour mesures d’absorbance, de fluorescence, de luminescence - Berthold, Tristar LB 941)
  • Dessiccateur à infra-rouges (Denver Instrument, IR 35)
  • Awmètre (Rotronic, AW-DIO)
  • Sonde à oxygène (Firesting)
  • Matériel complet pour la réalisation et l’analyse d’optode planaire O2 et pH et de gels DET 2D
  • Optodes O2 (Firesting)
  • Caméra hyperspectrale VNIR (SPECIM IQ)

Analyses microbiologiques, physiologiques et bio(géo)chimiques

Responsables : Isabelle Poirier, Florian Cesbron

  • Autoclaves (Prater, Aup 6031 ; Lequeux 40x70 ; Selecta, Presoclave 4001759)
  • Hotte à flux laminaire (Fasten KBM6)
  • Four à micro-ondes (Brandt)
  • Bains-marie (Memert)
  • Broyeur à pales (Seward, stomacher 80)
  • Enceintes de cultures pour bactéries (Memert, New Brunswick Scientific, C-24C incubator shaker)
  • Enceinte de cultures pour microalgues (Meditest 600/1300)
  • Quantum-mètre (Li-Cor Li-250)
  • Microscopes droit et inversé à épifluorescence avec caméra et analyse d’images (Leica)
  • Compteur automatique de colonies + logiciel associé (Interscience, Scan 500)
  • Compteur coulter (Beckmann)
  • Electrode à oxygène (Hansatech, Oxylab)
  • Sonde à oxygène Microélectrodes O2 (Unisense)
  • Microélectrode pH, O2, H2S (Unisense)

Equipements mutualisés inter-pôles

  • Thermomètres
  • pH-mètres
  • salinomètre
  • Centrifugeuses (Sigma 3K15, Rotina 420R, Thermo Scientific Multifuge)
  • Loupes Binoculaires
  • Lyophilisateurs
  • Congélateurs (-20 et -80°C)
  • Optodes 1D
  • Diving-PAM (Waltz)

Savoirs faire associés :

Sédimentologie – Géochimie

  • Analyser la répartition de la taille des grains ;
  • Déterminer la composition chimique élémentaire total du sédiment ou par fraction granulométrique ; 
  • Dosage du Carbone total, minéral et organique

Extraction, séparation et analyses ioniques/moléculaires

  • Extraire, séparer et analyser/doser des ions et biomolécules
  • Déterminer la composition chimique élémentaire bactérienne et algale par Fluorescence X ;
  • Doser les métaux dans les différents compartiments marins ;
  • Protéomique

 Biologie, physiologie et bio(géo)chimie

  • Identifier les espèces biologiques marines (bactéries, algues, macro-zoo benthos, méiofaune, poissons)
  • Aquaculture de macroorganismes marins (téléostéens, macro-algues, bivalves)
  • Cultures de microorganismes marins (microalgues et bactéries)
  • Analyses microbiologiques d’échantillons marins (dénombrement et identification des microorganismes)
  • Ecophysiologie des microorganismes marins (croissance, respiration, photosynthèse, mesure du stress oxydatif)
  • Caractérisation des communautés microbiennes de biofilms et de sédiments par métagénomique.
  • Cibler et quantifier des microorganismes d’intérêt ou pathogènes par l’utilisation des outils moléculaires.
  • Etudes en Ecotoxicologie         
  • Etudes de Bioremédiation
  • Etude de la distribution des espèces chimiques dissoutes dans la colonne d’eau et les eaux interstitielles des sédiments marins par approche 1D et 2D

Plateau de Calculs Scientifiques en Océanographie (CSO)

Responsables : Pascal Bailly Du Bois, Jerôme Thiebot, Yann Méar, Sylvain Guillou, Emmanuel Poizot

Equipements :

  • Modèles hydrodynamiques Mars2D, CROCO, Telemac, Palabos (LBM)
  • Modèles de transport sédimentaire Mustang, GSTA, MSTA et Telemac
  • Base de données bathymétrique du plateau continental (résolution inférieure à 100m)
  • Station de modélisation 3D
  • Calculateurs DELL PRECISION 44 cœurs 88 threads
  • Delph Seismic Interpretation (Version 5)
  • Delph Sonar Interpretation (Version 5)
  • Utilisation des supercalculateurs du CRIANN (région Normandie) et Ifremer DATARMOR (Ifremer)

Savoirs faire associés :

  • Simulation hydrodynamique de la dispersion de substances solubles du champ proche au champ lointain (côtier – plateau continental ; heures - années) ;
  • Simulation 3D du transport sédimentaire en Manche ;
  • Simulation de la turbulence ambiante et de la turbulence générée par des structures immergées ;
  • Estimation de la ressource et caractérisation de sites pour les EMR ;
  • Etudes d’impacts pour les EMR ;
  • Traitement et Interprétation de données géologiques du sous-sol (sismique) ;
  • Traitement de données d’imagerie sonar et interprétation en termes de couverture sédimentaire ;
  • Traitement de données de bathymétriques et interprétation morpho-bathymétrique ;
  • Traitement de données de topométrique (LIDAR) et interprétation de la topographie ;
  • Traitement de données multispectrales et hyperspectrales.

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